Prześwietlanie jaj jest podstawowym narzędziem diagnostycznym w zarządzaniu wylęgiem. Prześwietlając skorupę skupionym światłem, hodowcy mogą zidentyfikować jaja niepłodne, wykryć wczesną śmierć zarodka i usunąć jaja wadliwe, zanim zagrożą one bezpieczeństwu biologicznemu lub obniżą procent wylęgu jaj płodnych (Ernst i in. 2004; Clark 2002).
Czym jest prześwietlanie jaj?
Procedura ta polega na przyłożeniu jasnego źródła światła do szerszego końca jaja w zaciemnionym pomieszczeniu, co pozwala dostrzec komorę powietrzną, sieć naczyń krwionośnych, położenie zarodka oraz oznaki zepsucia. Nowoczesne prześwietlacze LED zapewniają lepszą widoczność w przypadku ras o ciemnych skorupkach, gdzie starsze urządzenia oferowały ograniczoną widoczność.
Na co zwracać uwagę podczas prześwietlania jaj?
Jajo zdolne do rozwoju wykazuje promieniującą sieć naczyń krwionośnych wokół centralnej ciemnej plamki; jajo niepłodne jest jednolicie przezroczyste. Śmierć zarodka objawia się pierścieniem krwi utworzonym przez zapadnięte naczynia krwionośne. Pływające lub ruchome żółtko wskazuje na rozkład (Ernst i in., 2004).
Etapy prześwietlania jaj kurzych przed wykluciem
Praktyka różni się w zależności od skali. W komercyjnych wylęgarniach standardowym terminem jest 18. dzień, który zbiega się z przeniesieniem jaj z inkubatora do wylęgarni. Partie brojlerów są w pełni prześwietlane; partie niosek – na podstawie próbek punktowych. W mniejszych stadach standardem są 7. i 14. dzień.
Prześwietlanie jaj w 7. dniu inkubacji
Pierwszym praktycznym terminem prześwietlania jaj kurzych jest około 7. dnia inkubacji. Prawidłowo rozwijające się jajo powinno wykazywać wyraźny zarodek znajdujący się w centrum sieci naczyń krwionośnych. Oko zarodka często widoczne jest jako ciemny punkt.
Nie zaleca się niepokojenia jaj w ciągu pierwszych trzech–czterech dni inkubacji, ponieważ w tym czasie intensywnie rozwijają się najważniejsze układy narządów.
Jaja bez widocznych naczyń krwionośnych lub z charakterystycznym „pierścieniem krwi” można na tym etapie usunąć, aby zmniejszyć ryzyko zanieczyszczenia inkubatora.
Prześwietlanie jaj w 14. dniu inkubacji
W 14. dniu inkubacji zarodek zajmuje już większość wnętrza jaja. Komora powietrzna staje się wyraźnie większa, a w przypadku żywych embrionów można czasami zauważyć ruch.
Martwe zarodki zwykle wyglądają na ciemne i nieruchome, bez widocznej struktury naczyń krwionośnych. Tego typu jaja należy usunąć z inkubatora, aby uniknąć pogorszenia warunków inkubacji dla pozostałych embrionów.
Prześwietlanie jaj: zapłodnione czy nie
Prawdziwa bezpłodność objawia się całkowicie przezroczystym jajkiem bez śladów rozwoju naczyń krwionośnych; wczesna śmierć zarodka może powodować pojawienie się słabo widocznego pierścienia krwi, zanim naczynia ulegną całkowitej regresji. Nie zawsze można odróżnić te dwa przypadki wyłącznie na podstawie prześwietlania; w celu potwierdzenia rzeczywistego wskaźnika zapłodnienia konieczne jest przeprowadzenie analizy rozbicia próby (Mauldin, 1993).
W przypadku powtarzających się przypadków podwyższonej niepłodności automatyczne codzienne pomiary masy ciała mogą ujawnić odchylenia w masie ciała i zmniejszoną jednolitość w stadzie rodzicielskim.
Indywidualne ważenie ptaków pozwala bezpośrednio powiązać zapisy dotyczące masy ciała z powtarzającymi się niepowodzeniami podczas prześwietlania w stadzie hodowlanym.
Prześwietlanie jaj kaczych
Jaja kacze mają 28-dniowy cykl inkubacji, co powoduje przesunięcie zalecanego harmonogramu prześwietlania w kierunku wcześniejszym. Pierwsze prześwietlanie powinno odbyć się między 7. a 10. dniem, a drugie między 14. a 18. dniem (Ernst i in., 2004). Skorupy jaj kaczych są grubsze niż skorupy jaj kurzych i wymagają jaśniejszego źródła światła.
Płodność, masa ciała i wylęgowość
Częste niepowodzenia podczas prześwietlania jaj często wynikają ze stanu stada hodowlanego. Badania potwierdzają, że u lżejszych kur prawdopodobieństwo pełnej produkcji pęcherzyków jajowych jest znacznie mniejsze – w grupie o najniższej masie wynosi ono około 90%, podczas gdy u cięższych ptaków przekracza 95% (Sibanda i in., 2020). Jednolita masa ciała w ramach standardów rasy jest bezpośrednio powiązana z wynikami płodności, które ma mierzyć prześwietlanie.
Automatyczna waga drobiowa BAT2 Connect zapewnia ciągłe dane dotyczące żywej wagi bez zakłócania rutynowych czynności stada, sygnalizując trendy wagi, zanim przełożą się one na podwyższoną niepłodność w inkubatorze.
Historia wagi przechowywana w Chmurze BAT zapewnia zespołom wylęgowym i produkcyjnym wspólny wgląd w wzorce masy ciała, które leżą u podstaw wyników prześwietlania.
W celu zapewnienia jednolitości poszczególnych ptaków ręczna waga do drobiu BAT1 stanowi precyzyjne, praktyczne uzupełnienie ciągłego automatycznego rejestrowania masy ciała.
Źródła
1.) Adegbenjo, A.O., Liu, L. and Ngadi, M.O. (2020). Non-destructive assessment of chicken egg fertility. Sensors, 20(19), 5546. DOI: https://doi.org/10.3390/s20195546
2.) Clark, F.D. (2002). Fertility and Embryonic Mortality in Breeders. Avian Advice, 4(2). University of Arkansas Cooperative Extension Service. URL: https://poultry-science.uark.edu/_resources/pdf/avian_advice_su2002.pdf
3.) Ernst, R.A., Bradley, F.A., Abbott, U.K. and Craig, R.M. (2004). Egg Candling and Breakout Analysis. ANR Publication 8134. University of California, Division of Agriculture and Natural Resources. DOI: https://doi.org/10.3733/ucanr.8134
4.) Mauldin, J.M. (1993). Quality control procedures for the hatchery. Bulletin B 1166. Athens: University of Georgia College of Agricultural Sciences Cooperative Extension. URL: https://secure.caes.uga.edu/extension/publications/files/pdf/B%201166_2.PDF
5.) Sibanda, T.Z., Kolakshyapati, M., Walkden-Brown, S.W., de Souza Vilela, J., Courtice, J.M. and Ruhnke, I. (2020). Body weight sub-populations are associated with significantly different welfare, health and egg production status in Australian commercial free-range laying hens in an aviary system. European Poultry Science, 84. DOI: https://doi.org/10.1399/eps.2020.295